Car-T细胞培养标准操作流程
1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。
2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养
3 责任人:实验员人、临床相关人员。
4 内容
4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管
4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。
4.3环境:
4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在百级生物安全柜内进行。
4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间
不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。
4.4操作:
4.4.1采集接收外周血
4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。
4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》,核对外周血患者相关信息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。
4.4.2操作前准备
4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安
全柜运行稳定。
4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。
4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。
4.4.3 分离单个核细胞(PBMC):
4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋
内外周血转入50ml离心管中。
4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。
4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。
4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。
4.4.3.5离心完成后,离心管出现明显分层由下至上:红细胞层,粒细胞层,Ficoll层,单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中,PBS稀释,与细胞悬液体积比应大于1:3,混匀。
4.4.3.6离心600g(1600r/min)5min,PBS重悬细胞混匀,取少量细胞计数。
4.4.3.7离心300g(1200r/min)5min,上清液送检无菌检测。
4.4.4细胞培养:
4.4.4.1细胞培养条件:恒温37℃,CO2浓度 5%,相对饱和湿度95%,细胞培养基PH值7.2-7.4。
4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。
4.4.4.3取出培养瓶,轻摇,使沉降于底部的悬浮细胞浮起,培养瓶倾斜30度角,移液管吸取培养基转入离心管中,少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集,混匀计数。
4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养。
4.4.4.5次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。
4.4.4.6细胞培养3天,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
4.4.4.7细胞培养5天去磁珠,细胞混匀转离心管中,在磁力架上去除磁珠,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
4.4.4.8定期观察细胞生长情况,主要观察其形态的变化,数目及增值情况,细胞碎片及杂质情况,每2-3天加液培养。
4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要,培养9天时细胞数量达到要求,各项检测合格。包括:无菌检测,内毒素检测,细胞活力,细胞表型等。
4.4.5 Car-T细胞收集:
4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。
4.4.5.2根据治疗方案(一般一个疗程分多次回输,间隔时间为1天),取出相应细胞悬液,剩余细胞补加培养基继续培养,供再次回输。
4.4.5.3细胞悬液转入离心管中,300g离心5min。
4.4.5.4除去上清培养液,加PBS缓冲液稀释混匀,300g离心5min,弃上清,PBS缓冲液300g/min离心5min。
4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100ml双阀盐水袋),离心完成后取上清,做无菌检测,20ml生理盐水重悬细胞,100μm细胞滤网过滤,取少量细胞悬液进行细胞数量,细胞活率,革兰氏检测,内毒素检测。
细胞过滤完成,转入100ml盐水袋中,加5%注射用人血白蛋白,贴上标签,并填写相关记录。
4.5细胞运输与保存:
4.5.1核对细胞标签内容,填写回输发放记录。
4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内(一般为疫苗箱,4度),填写交接记录表。
4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡,并在规定时间内送到。
4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右,并在规定时间内回输,如果患者不能按时回输,请及时联系实验技术人员,返回实验室。
来源:干细胞之家
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